猪源枯草芽孢杆菌 HEW －B113 的 鉴定及发酵工艺优化

尹望   杜志琳

（北京好实沃生物技术有限公司，北京 101399）

 

摘 要：研究从猪肠道中获得一株疑似枯草芽孢杆菌，通过形态特征、生理生化鉴定和 16S rDNA 分子 鉴定确定其为枯草芽孢杆菌，并采用液体发酵法，以发酵液中活菌数和芽孢数为指标，通过单因素试验和正 交试验对枯草芽孢杆菌 HEW － B113 的培养基和发酵条件进行优化。确定其最佳培养基配方为玉米淀粉 2%、 葡萄糖1%、豆粉1%、硫酸锰0. 2%和硫酸铁0. 15%; 最佳发酵条件为初始pH 7. 1、接种量0. 8%、发酵摇 瓶装液量100 mL/500 mL、转速200 r/min、发酵温度35 ℃及发酵时间40 h。采用枯草芽孢杆菌的最优发酵 工艺可以降低成本，提高质量，为枯草芽孢杆菌的扩大化生产提供理论依据。 

关键词：枯草芽孢杆菌; 鉴定; 发酵工艺

 

虽然抗生素等添加剂能够有效预防畜禽疾病， 但抗生素的滥用引起病菌产生耐药性、环境污染及 药物残留等不利影响，加之人们对食品安全的要 求，近年来，欧洲已有许多国家禁止使用抗生素作 为饲料添加剂，各国学者着力于研究抗生素的理想 替代品。微生态制剂作为一种饲料添加剂，不仅能 够防病治病，促进动物生长，而且具有无污染、无 残留及无抗药性的特点，是抗生素无法比拟的。枯 草芽胞杆菌是常用微生态制剂之一，芽孢杆菌是一 类好氧或兼性厌氧菌，可产生芽孢，能够耐酸耐 碱、耐高温和高压，具有较高的稳定性。它们在动 物消化道内的繁衍及代谢，能够产生多种维生素、 氨基酸、有机酸、蛋白质和多种有效的酶等，参与 机体的新陈代谢，有助于动物对饲料中营养物质的 消化吸收，从而促进动物生长; 同时还具有生物颉 颃功能，通过消耗肠道中的游离氧来维持肠道的厌 氧环境，可以有效抑制动物肠道有害菌的繁殖，维 持消化道菌群平衡。目前市场上已有大量枯草芽孢杆菌微生态制剂，但大部分菌株都是从诸如土壤、 水和草地等自然环境中分离获得的。要想获得好的 枯草芽孢杆菌作为饲料添加剂，枯草芽孢杆菌必须经 过长期的进化、与动物形成共生关系及来源于动物肠 道内，才可以更好地适应动物的体内环境，从而发挥 更好的效果。研究主要从健康的猪体内分离出经过适 应猪肠道环境的枯草芽孢杆菌，并对其发酵工艺进行 优化，为微生态饲料添加剂的开发提供候选菌株。 

1 材料与方法

1.1 材料 

1.1.1 供试菌种 菌种 HEW － B113 分离筛选自猪肠道内容物， 按照常规方法在营养琼脂 ( NA) 培养基上培养。 

1.1.2 主要试剂 细菌通用16S rDNA PCＲ 扩展引物27F 和1492Ｒ 由生物工程 ( 上海) 有限公司合成。TaqDNA 聚合酶 和 dNTP 购自生物工程 ( 上海) 有限公司。 

1.1.3 主要仪器 T － 42K 型高速冷冻离心机 ( 德国 KONTＲON 公司) ，MG48 + 型 PCＲ 仪 ( 杭州朗基科学仪器有限公司) ，GelDoc － It 200 型自动凝胶图像分析系统 ( Ultra － Violet ProductsLtd 公司) 。 1.1.4 培养基 菌落计数培养基 ( 牛肉膏蛋白胨固体培养基) : 牛肉膏 0. 3%，蛋白胨 1%，NaCl 0. 5%，琼脂粉 2%，pH 7. 2 ～7. 4; 种子培养基 ( 牛肉膏蛋白胨液体培养基) : 牛肉 膏0. 3%，蛋白胨1%，NaCl 0. 5%，pH 7. 2 ～7. 4; 基础发酵培养基: 葡萄糖 1%，蛋白胨 1%， MgSO4·7H2O 0. 1%，pH 7. 2 ～7. 4。 

1.2 方法

1.2.1 菌株 HEW － B113 的鉴定 菌株 HEW － B113 的初步鉴定: 将菌株 HEW － B113 划线接种于 NA 固体平板培养基上，37 ℃恒 温培养18 ～24 h 后，观察记录活性菌株的单菌落形 态，主要包括菌落形状大小、菌落颜色、菌落水 分、菌落厚度和透明度等。革兰染色法观察菌株 HEW － B113 的细胞形态。将活化后的菌株 HEW － B113 接种于 LB 培养基中，37 ℃ 200 r/min 恒温振 荡培养12 h 后，用带膜的铜网蘸取少量菌液，放置 90 s，用滤纸将边缘液体吸干; 然后将带菌的铜网 放入烧杯中用 ddH2O 漂洗，取出带菌铜网并将液体 用滤纸吸干，再用 2%磷钨酸处理 3 ～ 5 min，样品 负染色完成后用电镜观察。 生理生化特征: 参照东秀珠的 《常见细菌系统 鉴定手册》和第八版 《伯杰系统鉴定手册》中的方 法进行活性菌株生理生化鉴定。 分子生物学鉴定: 菌株 HEW － B113 基因组 DNA 提取参照姜云等的方法，采用 CTAB 法提取。 利用 细 菌 16S rDNA 通 用 引 物 ( F27: 5 ＇ － AGAGTTTGATCCTGGCTCAG － 3 ＇，Ｒ1492: 5 ＇ － TACGGCTACCTTGTTACGACTT －3＇ ) 对菌株 HEW － B113 的16S rDNA 基因片段进行 PCＲ 扩增，PCＲ 扩 增体系 ( 25 μL) 包括引物27F 和1492Ｒ 各1. 0 μL， Taq DNA 聚合酶 1. 5 U，10 × Taqbuffer2. 5 μL， Mg2 + ( 25 mmoL/L) 1. 5 μL，菌株 HEW － B113 基 因组 DNA 50 ng。反应条件为 94 ℃预变性 5 min， 94 ℃ 变性40 s，54 ℃退火1 min，72 ℃ 延伸1 min 30 s，共30 个循环，72 ℃温浴 10 min。反应结束 后取3 μL PCＲ 产物在 1. 5% 琼脂糖凝胶上进行电 泳检测。所得 PCＲ 产物回收纯化，送中科院微生物 所进行 DNA 序列的测定。将所测得的序列与 GenBank 中的16S rDNA 序列进行 BLAST 分析比对，检 索相似的序列和系统发育相关的物种，随后用 MEGA 5. 0 软件构建系统发育树。 

1.2.2 活菌和芽孢计数方法 活菌计数方法参照饲用微生物制剂中枯草芽孢 杆菌的检测 ( GB/T 26428———2010) 方法进行，将 培养完成的发酵液进行 10 倍倍比稀释至合适的稀 释度，取100 μL 稀释样液涂布平板，每个稀释度 做3 个重复，以平板上出现 30 ～300 个菌落数的稀 释度平板为计数标准进行活菌计数，根据稀释倍数计 算发酵液的含菌量。取培养完成后的发酵液10 mL 于 试管中，置于85 ℃水浴锅中恒温 10 min 后，取出 冷却，按照活菌计数方法测定处理后菌液中的细菌 总数，即为芽孢数。 1.2.3 种子液生长曲线的绘制 取活化后的 HEW － B113 转接 NA 试管斜面， 接种完成后置 37 ℃恒温培养 16 h。培养完成后， 取2 只试管斜面，分别加入 2 mL 无菌氯化钠注射 液制备成枯草芽孢杆菌菌悬液。将枯草芽孢杆菌菌 悬液接种于 NA 液体培养基中，接种量 1%，摇瓶 装液量100 mL/500 mL，接种完成后置于37 ℃恒温 振荡培养，摇床转速为200 r/min，每隔1 h 取出2 mL 测其活菌总数，绘制生长曲线。 1.2.4 培养基单因素试验 HEW － B113 培养基碳源、氮源和无机盐的优 化采用单因素试验。以基础培养基为发酵培养基， 分别用蔗糖、麦芽糖、可溶性淀粉、玉米淀粉、乙 酸钠和柠檬酸钠等量替换葡萄糖，分别测定发酵液 中活菌数和芽孢数获得最优碳源。然后以最优碳源 为碳源，无机盐和培养条件不变，分别用硝酸钠、 尿素、牛肉膏、酵母膏、氯化铵、豆粉、麸皮和硝 酸钾等量替换蛋白胨，分别测定发酵液中活菌数和 芽孢数获得最优氮源。在确定最优碳和氮源后，用 磷酸氢二钾、磷酸二氢钾、硫酸锰、硫酸镁、硫酸 铁、硫酸亚铁和硫酸锌等量的培养基中的 MgSO4· 7H2O，分别测定发酵液中活菌数和芽孢数获得最优 无机盐。 1.2.5 培养基正交试验 在单因素试验的基础上，确定了碳、氮源和无 机盐，通过预试验确定单因子的水平变化，因此以 检测发酵液中芽孢数 ( CFU) 为指标，选定 A ( 玉 米淀粉，g/100 mL) ，B ( 葡萄糖，g/100 mL) ，C

(豆粉，g/100 mL)，D (酵母膏，g/100 mL)，E ( 硫 酸锰，g/100 mL) ，F ( 硫酸铁，g/100 mL) 6 个因 素，设5 个水平进行正交试验 ( 见表1) 。试验重复3 次，检测方法同上，将3 次结果的平均值作为试验结 果，用SPSS 软件分析获得发酵最佳配方。

表1 HEW －B113 发酵培养基正交试验

 

1.2.6 培养条件的优化 在确定发酵培养基成分后测定不同培养条件下 发酵液中的活菌数和芽孢数。以发酵液中活菌数和 芽孢数为指标分别对接种量、发酵摇瓶装液量、转 速、初始 pH、发酵温度和发酵时间进行优化获得 最优发酵条件。 

2 结果与分析 

2.1 菌株 HEW － B113 鉴定结果 通过对菌株HEW －B113 形态特征观察 (见图1)， 试验结果表明其在 NA 培养基上菌落呈污白色，菌落 不透明，表面水分较少且粗糙有褶皱，当液体静止培 养时能形成皱醭; 通过光学显微镜和电子显微镜观察 发现，菌株 HEW － B113 为革兰阳性杆菌，无荚膜， 周生鞭毛，具有运动性，能产生椭圆形芽孢。 通过生理生化鉴定获得菌株 HEW － B113 的生理 生化特征，从表 2 可见: 菌株 HEW － B113 能耐受 7%NaCl，45 ℃下生长良好，4 ℃下不能生长，能利 用柠檬酸盐，不能利用丙二酸盐，V － P 为阳性，并 能利用多种糖醇产酸。生理生化与模式枯草芽孢杆 菌比较可以鉴定菌株 HEW －B113 为枯草芽孢杆菌。 

表2 菌株 HEW －B113 主要生理生化鉴定结果 

 

注: 表中“ND”表示未测定， “d”表示 11% ～ 89% 菌株为阳性， “－ ”表示阴性，“+ ”表示阳性。

注: 从左到右依次为单菌落形态、细胞形态和革兰染色形态HEW － B113

图1 HEW － B113 菌株的形态特征 

利用细菌通用引物27F 和1492Ｒ 扩增获得枯草 芽孢杆菌的 16S rDNA 片段，片段大小在 1 500 bp 左右 ( 见图2) ，测序获得菌株 HEW － B113 的 16S rDNA 序列，其长度为 1 419 bp。将获得的序列用 MEGA5. 0 构建系统进化树 ( 见图3) 进行序列比较 分析，可以看出 HEW － B113 与枯草芽孢杆菌聚于 同一分支中，其同源性分别达到99%。通过菌株 HEW － B113 的形态特征、生理生化反应和分子特 征，鉴定菌株 HEW － B113 为枯草芽孢杆菌。登录 号为 KF849801。

注: B HEW － B113，M DL2000 Marker。 

图2 菌株 HEW － B113 16S rDNA PCＲ 扩增结果

图3 菌株 HEW － B113 系统发育分析 

2.2 菌株 HEW － B113 的生长曲线 通过活菌计数绘制枯草芽孢杆菌 HEW － B113 的生长曲线 ( 见图 4) ，当枯草芽孢杆菌 HEW －B13 刚接入培养基中的前1 h，菌体生长缓慢，一 直处于平稳状态，到 1 h 时菌体开始增加，从 1 h 后菌体迅速呈对数生长，由此可以判定0 ～1 h 为延 滞期; 当菌体生长到 4 h 后由于培养基中成分基本 被利用，菌体的生长减慢，到 5 h 后菌体量基本不 再增加，由此可以判定 1 ～ 5 h 为枯草芽孢杆菌 HEW － B13 的对数生长期; 5 h 开始培养基中的菌 体量基本趋于平稳，到11 h 后培养基中菌体量开始 下降，由此可以判定 5 ～11 h 为稳定期，11 h 后枯 草芽孢杆菌 HEW － B13 的生长进入衰亡期。由生长 曲线可知1 ～5 h 为枯草芽孢杆菌 HEW － B13 的对 数生长期，在对数生长期内，菌体生长活性最强， 最适合做种子液，通过试验时间考虑，我们选取 5 h时的发酵培养液作为下一步发酵培养的种子液。

图4 枯草芽孢杆菌 HEW －B113 生长曲线

2.3 菌株 HEW － B113 发酵培养基单因素试验结果 

2.3.1 碳源优化结果 通过48 h 发酵后，检测各碳源对枯草芽孢杆菌 HEW － B113 活菌数和芽孢数的影响结果见图4，可 见葡萄糖为最适碳源，其活菌数和芽孢数分别为25 亿 CFU/mL 和 6. 8 亿 CFU/mL，其次为玉米淀粉， 其活菌数和芽孢数分别为 23 亿和 7. 5 亿 CFU/mL。 考虑到实际生产应用选取玉米淀粉和葡萄糖复配作 为下一步研究的碳源，玉米淀粉和葡萄糖比例 为2∶1。 

2.3.2 氮源优化结果 通过48 h 发酵后，检测各氮源对枯草芽孢杆菌 HEW －B113 活菌数和芽孢数的影响结果见图5，从活 菌数看，豆粉为最适氮源，其活菌数和芽孢数分别为 47 亿和27 亿 CFU/mL; 从芽孢数看酵母膏为最适氮 源，其活菌数和芽孢数分别为45 亿和36 亿CFU/mL;从芽孢率看酵母膏为最适氮源，由营养成分组成及 成本看，选取豆粉和酵母膏为最适氮源，其分配比 例为3∶1。

图4 枯草芽孢杆菌 HEW － B113 碳源筛选结果

图5 枯草芽孢杆菌 HEW － B113 氮源筛选结果

2.3.3 无机盐优化结果 通过48 h 发酵后，检测各无机盐对枯草芽孢杆 菌 HEW － B113 活菌数和芽孢数的影响结果见图6， 硫酸锰为最适无机盐，其活菌数和芽孢数分别为65 亿和39 亿 CFU/mL，其次为硫酸铁，其活菌数和芽 孢数分别为 44 亿和 32 亿 CFU/mL。考虑到实际生 产应用选取硫酸铁和硫酸锰复配作为下一步研究的 无机盐，硫酸铁和硫酸锰比例分别为1∶1。 

2.4 菌株 HEW － B113 发酵培养基正交试验结果 通过48 h 发酵后，检测各发酵液的枯草芽孢杆 菌 HEW － B113 芽孢数，结果见表 3，由表中 Ｒ 值 可知各因素对 B113 芽孢数的影响大小依次为 B ＞ A ＞ F ＞ C ＞ E ＞ D，根据 k 值可确定各因素水平的最 佳组合为 A5B3C2D1E5F4，即玉米淀粉 2%、葡萄 糖1%、豆粉1%、硫酸锰02. %和硫酸铁0. 15%。

表3 枯草芽孢杆菌 HEW － B113 培养基正交试验结果

图6 枯草芽孢杆菌 HEW －B113 无机盐筛选结果 

 

2.5 菌株 HEW － B113 发酵条件试验结果 确定最佳发酵培养基的成分之后，对发酵条件 进行逐一优化，获得最优发酵条件。当初始 pH 7. 1、 接种量0. 8%、发酵摇瓶装液量100 mL/500 mL、转 速200 r/min、发酵温度 35 ℃及发酵时间 40 h 时，菌株 HEW － B113 发酵液中的活菌及芽孢数最多， 因此将其作为最优发酵条件。

2.6 验证性试验 运用优化后的发酵条件进行验证试验，至少 3 次重复试验，测发酵液中活菌数及芽孢数。结果均 比对照组高，且存在显著性差异。由此可见验证试 验结果均高于正交试验的各试验组，并且重复性 好，说明该发酵条件是较优条件。 

3 讨论 益生芽孢杆菌可产生脂肽、肽、磷脂、多烯、 氨基酸和核酸等多种抑菌物质，具有广谱抑菌活 性，绿色无污染。目前芽孢杆菌类是研究比较广泛 的一类防治疫病的微生物。已有很多研究表明，益 生芽孢杆菌可应用于畜牧养殖中，能够颉颃病原微 生物、增强机体的免疫力及提高养殖的经济效益。 研究从健康猪肠道中分离获得一株芽孢杆菌 HEW － B113，通过细菌鉴定的方法 如形态学、生理生化和分子生物学法鉴定，最终确 定其为枯草芽孢杆菌，并对其发酵培养基成分及发 酵条件进行优化，最终获得 HEW － B113 的最优发 酵培养基为玉米淀粉2%、葡萄糖 1%、豆粉 1%、 硫酸锰0. 2%和硫酸铁 0. 15%; 最佳发酵条件为初 始 pH 7. 1、接种量 0. 8%、发酵摇瓶装液量 100 mL/500 mL、转速 200 r/min、发酵温度 35 ℃及发 酵时间40 h。研究为优良益生菌的筛选提供了丰富 的菌株来源，为进行菌株的耐酸碱、耐胆盐、益生 特性及安全性等研究奠定了基础。

参考文献：

［1］Duc LH，Hong HA，Barbosa TM，et al． Characterization of bacillus probiotics available for human use［ J］． Appl． Enviro． Microbiol． ，2004， 70(4):2161 －2171． 

［2］窦茂鑫，赵迪，王蕾，等． 猪源枯草芽孢杆菌的分离 鉴定及生物学特性研究［ J］ ． 养殖与饲料，2012(4): 11 －14． 

［3］Hoa N T，Baccigalupi L，Huxham A，et al． Characterization of Bacillus species used for oral bacteriotherapy and bacterioprophylaxis of gastrointestinal disorders［ J］． Applied and Environmental Microbiology， 2000， 66(9):5241 －5247．

［4］Himanen J P，Pyhl L，Olander Ｒ M，et al． Biological activities of lipoteichoic acid and peptidoglycan － teichoic acid of Bacillus subtilis 168( Marburg) ［ J］． Journal of general microbiology，1993，139(11) : 2659 － 2665． 

［5］姜云，尹望， 陈长卿， 等．人参内生颉颃细菌NJ13 的鉴 定及发酵条件［ J］ ． 农药，2013， 52(2):97 －101． 

［6］东秀珠，蔡妙英． 常见细菌系统鉴定手册［M］ ． 北 京:科学出版社，2001:353 －398． 

［7］布坎南 Ｒ E，吉本斯 N E． 伯杰氏细菌鉴定手册 ［ M］ ． 北京:科学出版社． 

［8］姜云，尹望，陈长卿，等． 人参内生可培养细菌16S rDNA － ＲFLP 分析［ J］ ． 东北林业大学学报，2012， 40(8):34 －39． 

［9］Tamura K，Dudley J，Nei M，et al ． MEGA4: Molecular Evolutionary Genetics Analysis( MEGA) Software Version 4． 0［ J］． Molecular Biology and Evolution， 2007， 24(8):1596 －1599． 

［10］魏姗姗，马红霞，高云航，等． 猪源益生枯草芽孢 杆菌的分离鉴定及培养条件优化［ J］ ． 中国饲料， 2014(5):21 －25，28．